Frossen seksjonsanalyse
Dette er nødvendig hvis kirurgen trenger informasjon om vevet som fjernes under en operasjon for å kunne bestemme løpet av prosedyren. For eksempel fjernes en liten ondartet svulst fra nyre. Nå kreves det et raskt snitt for å se om svulsten er fullstendig fjernet, eller om det fortsatt er store mengder ondartet vev i kantene av vevsprøvene.
Til slutt bestemmer utfallet av den frosne seksjonsundersøkelsen løpet av operasjonen og pasientens videre behandlingsplan. Hvordan fungerer en frossen seksjonsundersøkelse? Innen 10 minutter stabiliseres vevet ved frysing ved -20 ° C, og deretter blir det laget et 5-10 um tykt snitt på den såkalte mikrotomen. Denne plasseres på et lysbilde, en liten glassplate, og flekkes raskt. På slutten blir funnene undersøkt under mikroskop, og resultatet kan umiddelbart videresendes til operasjonsstuen.
Fargemetoder
Mange histologiske fargemetoder har utviklet seg de siste 120 årene. Cellestrukturene og vevene er delt inn i basofile, acidofile og nøytrofile celler basert på farreaksjonen med fargemidlene. Videre er det også agyrofile og nukleofile strukturer.
Basofil flekker alt som inneholder en syregruppe og er farget med et grunnleggende fargestoff (for eksempel hematoksylin eller metylenblått). Strukturer som er acidofile er basiske og kan derfor farges med erosjon eller surt fuchsin (syrefargestoffer). Disse inkluderer cytoplasma og kollagen fibre.
Neutrofile eller lipofile komponenter kan ikke reagere med verken et surt eller et basisk fargestoff og kan derfor ikke farges. Agyrofile komponenter kan binde sølvioner og konvertere dem til elementært sølv. En nukleofil (kjerne = cellekjerne, cellekjerneelskende) farreaksjon resulterer fra nukleofile fargestoffer i cellekjernenDette er DNA-bindende eller basiske stoffer som binder seg til nukleinsyrer.
I dag har de velprøvde kjemiske fargemetodene blitt supplert med immunologiske metoder. Antigen-antistoffreaksjonen brukes i denne teknikken for å oppdage visse celleegenskaper. Reaksjonen kan deretter synliggjøres med en sofistikert teknikk.
Ofte brukte fargemetoder er: HE-farging = Hematoksylin-Eosin-farging: Hematoksylin, et naturlig fargestoff, flekker alle strukturer blått, som er basofile (= basekjære) og derfor sure, slik som DNA, cellekjerner, ribosomerosv. Eosin produseres derimot syntetisk. Eosin flekker alle cellestrukturer røde hvis de er acidofile (= syreelskende) eller basiske.
De proteiner av cytoplasma, mitokondrierog kollagen er blant dem. Azan-farging: Den består av de første bokstavene i begge farger, azocarmine G og aniline blue-gold orange: Dette flekker cellekjernen og muskelfibre røde og cytoplasma rødlige. kollagen og retikulære fibre blir blå i denne fargingen.
Giemsa-flekken (Giemsa's Azure-Eosin-Methylene Blue) brukes til å flekker blod celleutstryk. Cellekjerner kan lett gjenkjennes ved den lilla farreaksjonen. Cytoplasmaet flekker blåaktig.
I elastisk farging (resorcinol-fuchsin-orcein) er alle elastiske fibre vist i svart-fiolett. Van Gieson-fargemetoden er preget av det faktum at farging først utføres med hematoksylin. Deretter brukes pikrinsyre fuchsin (mikrofuchsin) eller pikrinsyre tiazin.
Til slutt virker cellekjernene svart-mørkebrune, cytoplasma virker ganske lysebrun. Motfarging med pikrinsyretiazin flekker de elastiske fibrene og muskelvevet oransje-gult og kollagenfibrene røde. I trikromfarging ifølge Masson-Goldner er størrelsen på fargestoffmolekylet den viktigste faktoren i fargemetoden.
Jernhematoksilin brukes, vanligvis med tre ekstra fargestoffer, nemlig syrevrev, oransje G og lysegrønn. Det flekker kollagen bindevev og slimgrønt, cellekjerner blåsvart, cytoplasma rødt, muskler blekrødt og rødt blod celler (erytrocytter) oransje rød. I tillegg er det en Gram-farging som tjener til å differensiere bakterie.
Gram-positive bakterie er farget blått og gramnegative bakterier farges rødt. Ziehl-Neelsen-farging brukes også til bakterie, nemlig de som er syrebestandige og for eksempel viser tuberkulose patogener i rødt. Andre fargemetoder som bør nevnes her er Berlin-Blue-reaksjonen, som er ansvarlig for påvisning av treverdige jernioner i vevssnitt, og jernhematoksylinfargemetoden ifølge Heidenhain.
